Правила забора мазок на кишечную группу

Оснащение:

Чашки Петри со средами Эндо и Плоскирева для прямого посева. Пробирки с селенитовым бульоном как средой обогащения.
Штатив для пробирок.
Перчатки.
Бланк-направление, стеклограф.

Подготовка к процедуре.

Подготовить необходимое оснащение.
Выписать направление в баклабораторию.
Поставить стеклографом номер на пробирке, соответствующий номеру в направлении.
Вымыть и осушить руки надеть перчатки.

Выполнение процедуры.

Уложить ребенка на левый бок с согнутыми в коленях и приведенными к животу ногами.
Раздвинуть ягодицы ребенка 1 и 2 пальцами левой руки и зафиксировать ребенка в данном положении.
Правой рукой взять металлическую петлю и осторожно вращательными движениями ввести ее в прямую кишку и собрать содержимое со стенок.
Примечание: глубина введения петли у детей раннего возраста 3 – 4 см., у старших детей – 6 – 8 см.; петлю продвигают вначале по направлению к пупку, затем параллельно позвоночнику.
Извлечь петлю из прямой кишки и произвести прямой посев на питательные среды. Либо поместить петлю в пробирку с селенитовым бульоном.
Примечание: не брать кал с явными примесями крови, т.к. кровь имеет бактерицидные свойства.

Завершение процедуры.

Снять перчатки, поместить в дезраствор.
Вымыть и осушить руки.
Отправить материал в баклабораторию в сопровождении направления (допускается хранение пробирки в холодильнике при температуре +3 – +40С).

После я приступила к взятию материала на носительство стафилакокка

Взятие материала из носа:

Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
Берем стерильный ватный тампон, и не касаясь наружной поверхности носа вводим его в правый носовой ход.
Снимаем слизь со стенок носовой перегородки.
Вынимаем тампон из носа.
Этот же тампон, не касаясь наружной поверхности носа, вводим в левый носовой ход.
Снимаем слизь со стенок носовой перегородки
Вынимаем тампон из носового хода.
Делаем первичный посев материала на среду ЖСА тампоном, на половину чашки. (на вторую половину сеют материал из зева)
Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С

Взятие материала из зева:

Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
Просим пациента открыть рот.
В левую руку берем шпатель и вводим его в ротовую полость.
Придавливаем язык книзу и немного кпереди.
В правую руку берем стерильный тампон и вводим в полость рта не касаясь губ, языка, зубов и боковых стенок полости рта.
Снимаем налет и слизь с миндалин , дужек мягкого неба и задней стенки глотки.
Вынимаем тампон изо рта обследуемого, затем вынимаем шпатель.
Делаем первичный посев материала на среду ЖСА тампоном на вторую половину чашки.
Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С .

Взятие материала на носительство дифтерии

Цель исследования: выделение возбудителя дифтерии.

Взятие материала из носа на дифтерию и первичный посев на среду:

Оборудование: стерильный ватный тампон, чашка Петри со средой КБА, стеклограф, петля, штатив, пробирки, шпатели в крафт – пакете.

Ход работы:

Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
Берем стерильный ватный тампон, и не касаясь наружной поверхности носа вводим его в правый носовой ход.
Снимаем слизь со стенок носовой перегородки.
Вынимаем тампон из носа.
Этот же тампон, не касаясь наружной поверхности носа, вводим в левый носовой ход.
Снимаем слизь со стенок носовой перегородки
Вынимаем тампон из носового хода.
Делаем первичный посев материала на среду Клауберга тампоном, на половину чашки. (на вторую половину сеют материал из носа)
Сначала делаем посев на участке площадь. 2*1кв.см. всей поверхностью тампона. Остальную площадь засевают этим же тампоном, круговыми движениями втирая материал в поверхность среды.
Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С

16. Взятие материала из зева на дифтерию и первичный посев на среду:

Ход работы:

Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
Просим пациента открыть рот.
В левую руку берем шпатель и вводим его в ротовую полость.
Придавливаем язык книзу и немного кпереди.
В правую руку берем стерильный тампон и вводим в полость рта не касаясь губ, языка, зубов и боковых стенок полости рта.
Снимаем налет и слизь с миндалин , дужек мягкого неба и задней стенки глотки на границе пораженного и здорового участков.
Вынимаем тампон изо рта обследуемого, затем вынимаем шпатель.
Делаем первичный посев материала на среду Клауберга тампоном, на половину чашки. (на вторую половину сеют материал из зева)
Сначала делаем посев на участке площадь. 2*1кв.см. всей поверхностью тампона. Остальную площадь засевают этим же тампоном, круговыми движениями втирая материал в поверхность среды.
Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С .

Цифровой отчет:

Выписка направленный-42

Заполнение журнала-3

Выписка результатов-42

Взятие материала на стафилакокк-10

Взятие материала на носительство дифтерии -12

Взятие материала на кишечную группу-20

Шестой день практики.Шестой день я продолжила в регистратуре. В этот день я забирала материал на холеру(форма №30)

Взятие материала на холеру

Методы первого, второго, третьего, четвертого дня исследования при выделении и идентификации холерного вибриона. Тесты, применяемые для идентификации культуры холерного вибриона.

Алгоритм действия:

1. Материал засейте в 1% пептонную воду объемом 50-100мл.

2. Параллельно засейте материал на щелочной агар

3. Из материала приготовьте мазки, зафиксируйте в смеси Никифорова

4. Мазки из материала окрасьте фуксином и по Граму

5. Проверьте подвижность в раздавленной и висячей капле

6. Через 6-8 часов исследуйте пептонную воду на наличие пленки на поверхности среды

7. Пересейте на вторую пептонную воду

8. Приготовьте мазок из посева, окрасьте по Граму и фуксином

9. Поставьте с культурой ориентировочную реакцию агглютинации на стекле с О сывороткой

10. Поставьте с культурой ориентировочную реакцию агглютинации на стекле с О сывороткой

11. Колонии с щелочного агара изучите в РА

12. При положительной РА ставьте реакцию с типовыми сыворотками Огава и Инаба

13. При положительно РА изучите типичные морфологию и культуральные свойства

14. Типичную культуру высейте на полиуглеводную среду и бульон

15. После инкубации в течении 3-4 часов с бульонной культурой ставьте развернутую РА

16. Полиуглеводная среда изменяет цвет столбика (расщепление сахарозы), скошенная часть не меняется

17. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – морфология

18. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – подвижность в висячей или раздавленной капле

19. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – культуральные свойства

20. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – сахаралитические свойства

21. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – протеолитические свойства

22. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – гемолитические свойства

23. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – уреазная активность

24. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – восстановительные свойства (реакция холера-рот) восстанавливают нитраты в нитриты

25. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – диастатическая активность (расщепляет крахмал)

26. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – реакция Фогес-Проскауэра (красное окрашивание культуры при добавлении специального химического ингредиента)

27. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – проба на оксидазу (культура при добавлении специального химического ингредиента окрашивается в ярко-синий цвет)

Цифровой отчет:

Прием мазков из зева на холеру-6

Прием мазков из носа-6

Выписка направленный-6

Заполнение журнала-1

Выписка результатов-6

Седьмой день практики .День началсяв отделе по кишечным инфекциям.Цель: Прием и регистрация анализов.

Провести обеззараживание инфицированного материала, рабочего места, случайно загрязненных участков тела, одежды, предметов рабочего стола.Подготовка биологического субстрата( кал, моча, отделяемое из ран, ушей, влагалища, уретры, рвотные массы, промывные воды, ) к бактериологическому исследованию и первичный посев на твердые питательные среды и среды накопления.

Работа с термостатом и центрифугой. Техника безопасности.Выделение чистой культуры микроорганизмов и изучение ее основных свойств (морфологических, культуральных, биохимических, антигенных свойств).Приготовить микропрепараты из микробных культур и патологического материала, окраска их простыми и сложными методами окраски (по Граму, окраска капсул по Бурри по Цилю Нильсену и т.д.).Микроскопирование с иммерсионной системой и в «темном поле».

Приготовить нативные препараты висячей и «раздавленной» капли. Микрокопирование.Постановка и учет иммунологических реакций: агглютинации на стекле и объемным методом, РПГА. Регистрация и выдача результатов. Ведение дневников

Микробиологическое исследование.

Цель исследования:выделение возбудителей заболевания и определение серовара сальмонелл.

Материалом для исследования могут быть:испражнения, кровь, моча, рвотные массы, промывные воды, дуоденальное содержимое. В данном случае материалом для исследования служит испражнения взятые с помощью тампона из прямой кишки(ректальный метод).Доставка материала в лабораторию должна осуществляться в течение 2 ч.После сбора материала, тампон помещают в селенитовый бульон(среда обогащения- для накопления сальмонелл) и ставят в термостат при температуре 37 градусов на 24 ч.Посев материала на дифференциальные среды Плоскирева, Эндо и ВСА (висмут-сульфит агар)

Посев на ВСА:

1.Подписала чашку Петри со средой- поделила на две части и подписала каждую сторону.

2.Взяла тампон с материалом- сначала сделала площадку, а затем произвела посев штрихами до половины чашки.

3.Следующий посев произвожу на другой половине чашки Петри.(18 чашек)

4.Чашки ставлю в термостат при температуре 37 градусов на 24 ч.

Колонии сальмонелл на среде ВСА- мелкие,черные,блестящие,когда снимают петлей оставляют черное дно.

Колонии сальмонелл на среде Плоскирев– мелкие нежные, полупрозрачные,с ровными краями.

Колонии сальмонелл на среде Эндо– мелкие нежные,розовые, полупрозрачные.

Обработала стол дез.средством.

5.Просмотр чашек,отсев подозрительных колоний на среду Клиглера (трехсахарная среда).Изменение цвета среды в скошенной части при расщеплении сахарозы и лактозы, а изменение цвета в столбике- при расщеплении глюкозы. Сами бактерии при ферментации углеводов образуют газ (водород и углекислый газ),происходит скопление газа на дне пробирки. Эта среда позволяет определить образование сероводорода, при этом агар чернеет.

6.Постановка биохимического ряда- ПБДЭ(см.табл.)

7.Фаготипирование(делается параллельно с биохимией)

Рекомендуемые страницы:

Как берут мазок из прямой кишки

Девушка стоит в колено-локтевой позе Забор материала производится у пациентки, которая сидит в гинекологическом кресле или находится на кушетки в колено-локтевом положении. В прямую кишку через задний проход вводят стерильный одноразовый зонд, вращательными движениями собирают материал, зонд вынимают и помещают в стерильную пробирку, которую доставляют в лабораторию.

Мазок из анального отверстия при аккуратном выполнении является совершенно безболезненной диагностической процедурой. Именно поэтому взятие мазка из попы в колено-локтевой позе является предпочтительным.

Показания к сдаче ректального мазка

Чаще всего анальный мазок назначается при подозрении на глистные инвазии, сопровождающиеся волне специфическими симптома симптомами. Кроме этого сдать мазок из попы на тот или иной вид диагностики рекомендуется в следующих нижеприведенных случаях:

Нарушения работы органов желудочно-кишечного тракта;
Зуд в области анального отверстия;
Наличие папиллом и кондилом урогенитальной области;
Подозрение на возможность инфицирования при анальном половом акте;
Нарушения психо-эмоционального состояния;
Кожные реакции – аллергические и непонятной природы;
Мазок из заднего прохода сдают беременные женщины или планирующие беременность;
Люди, оформляющие медицинскую книжку;
Пациенты, поступающие в стационар на лечение или операцию;
Для проверки эффективности лечения глистов;
Лица, работающие с пищевые продуктами и другой декретированный контингент.

Необходимость сдать мазок из ануса у многих девушек вызывает некоторое смущение. Это является важным этапом обследования женщин, практикующих анальный секс. Также рекомендуется сдача соскоба из заднего прохода на инфекции после случайного анального сношения с партнером, у которого предположительно имеется инфекционные заболевания полового органа. Анализы из прямой кишки дают исчерпывающую информацию о составе микрофлоры в этой области. Такая диагностика позволит определить скрытно протекающие формы заболеваний, передающихся при сексуальной близости или ряда половых инфекций.

Девушки-девственницы, желающие сохранить девственную плеву нетронутой, часто допускают интимные сношения в прямую кишку. Они, как правило, происходят без использования презерватива, что автоматически переводит таких пациенток в группу риска по носительству ряда патогенных микробов (гонококки, вирусы папилломы, хламидии). В этом случае им также рекомендуется регулярно проверяться у гинеколога и сдавать анализы на скрытые инфекции в данной локации.

КАК ПРАВИЛЬНО ПОДГОТОВИТЬСЯ

Кишечник перед визитом в лабораторию желательно опорожнить, после чего подмыться. Нежелательно сдавать мазок из попы во время продолжительного запора или в период острой диареи, так как результаты могут быть неточными.

Виды анализов мазка из прямой кишки	Вид	Цена
На микрофлору	мазок	450
На ПЦР	соскоб	450
На посев	мазок	1 750
Чувствительность к антибиотикам	посев	1 750
На золотистый стафилококк + антибиотики	бакпосев	1 250
На стрептококк + антибиотики	посев	1 450
Гемолитический стрептококк + антибиотики	бакпосев	1 450
На листерии	соскоб	1 500
На молочницу	посев	1 500
Взятие материала		450
Все виды анализов на кишечные инфекцмм		здесь!

Источник

Забор крови с 8-00 до 12-00, с 13-00 до 16-00 в 120 каб.

Желательно сдавать кровь строго натощак.

Кровь на иммунограмму, биохимию, общий анализ можно сдавать через 2-3 часа после еды,

кровь на ИФА можно сдавать после легкой еды.

Кабинет 120.

Общий анализ мочи, анализ мочи по Нечипоренко

Моча собирается в чистую сухую посуду после тщательного туалета наружных половых органов. Для общего анализа мочи лучше использовать первую утреннюю порцию мочи, выделенную после сна, в количестве 100 мл. Для анализа мочи по Нечипоренко – среднюю порцию утренней мочи в количестве 10 мл.

Прием анализа: пн.-пт. 8:00-12:00; 13:00-16:00; в кабинете 123

Соскоб на энтеробиоз

Необходимо заранее взять в лаборатории (кабинет 123) предметное стекло с наклеенной липкой лентой, внимательно выслушать инструкции лаборанта по забору анализа, дома (следуя инструкции) наклеить липкую ленту на перианальную область, снять, наклеить на предметное стекло, не порвав ее.

Прием анализа: пн.-пт. 8:00-12:00; 13:00-16:00, в кабинете 123

Анализ кала на яйца глистов, цисты лямблий, антиген лямблий

Собрать кал в чистую сухую пластиковую или стеклянную банку. Если собран вечерний кал, то до доставки в лабораторию поместить образец в холодильник. Анализ готовится 2 рабочих дня

Прием анализа: пн.–пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00 (до 14:00 на антиген лямблий), в кабинете 123

Исследование кала на «скрытую кровь»

Собрать кал в чистую сухую пластиковую или стеклянную банку.

До сдачи анализа исключают из пищи в течение 3-4 дней мясо, рыбу, все виды зеленых овощей, а также помидоры и яйца. Сдают на анализ утренний кал в чистой сухой посуде.

Прием анализа: пн.–пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00, в кабинете 123

Бактериологическое исследование кала
(на дисбактериоз, на кишечную группу бактерий)

Желательно собрать утренний кал в специальную стерильную посуду (если невозможно, вечерний кал хранить в холодильнике, доставить в лабораторию к 8.00): положить в специальную стерильную баночку стерильной лопаточкой примерно с половину чайной ложечки, с самой верхней части испражнений, не касаясь других предметов. Баночку закрыть и доставить в лабораторию в течение двух часов.

Прием анализа: пн.–пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00 в кабинете 123

Анализ на дисбактериоз готовится 5 рабочих дней.

Бактериологическое исследование мочи

Моча собирается в специальную стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов. При циститах берут первую порцию мочи в количестве 3-5 мл, при заболеваниях почек – среднюю порцию мочи в том же количестве. Доставить в лабораторию не позднее 2 часов после забора.

Прием анализа: пн.-пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00 в кабинете 123

Анализ готовится 4 рабочих дня

Бактериологическое исследование мокроты

Утреннюю мокроту, выделившуюся во время приступа кашля, собирают в стерильную баночку. Перед откашливанием пациент чистит зубы и полощет рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости. Забранная мокрота доставляется в лабораторию не позднее 1,5-2 часов после забора.

Прием анализа: пн.–пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00 в кабинете 123.

Анализ готовится 4 рабочих дня.

Бактериологическое исследование грудного молока

Для сбора молока на анализ:

1. Тщательно вымыть руки с мылом;

2. Тщательно вымыть грудь с мылом и обтереть чистым проглаженным полотенцем;

3. Руки и соски молочных желез протереть тампоном, смоченным 40% спиртом или водкой;

4. Осторожно открыть стерильную банку, крышку положить наружной стороной;

5. Первые капли грудного молока сцедить в полотенце, последующие – в стерильную баночку;

6. Плотно закрыть крышку, упаковать в пакет и доставить в лабораторию не позднее 1,5-2 часов после забора.

Прием анализа: пн.–пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00 в кабинете 123

Анализ готовится 3-4 рабочих дня.

Подготовка к сдаче мазка из зева

Мазок из зева забирается до утреннего туалета полости рта (до чистки зубов и полоскания ротовой полости) и натощак или через 2 часа после еды

Прием анализа: пн.–пт. с 8:00-12:00; с 13:00-16:00 в кабинете 123

Анализ готовится 4-6 рабочих дня.

ПОДГОТОВКА К ДУОДЕНАЛЬНОМУ ЗОНДИРОВАНИЮ

3а 2-3 дня до исследования исключить из пищи картофель, бобовые, цельное молоко, черный хлеб, жареные блюда.

На дуоденальное зондирование необходимо подходить к 8.00 в кабинет 125

натощак (не есть, не пить, не курить).

С собой иметь полотенце.

В случае невозможности явиться на дуоденальное зондирование в назначенный день, пожалуйста, сообщите по тел. 28-99-90 или 28-99-91 (пн.–пт. 8 – 17)

Слепое зондирование (тюбажи по Демьянову)

Утром натощак выпить 1 стакан минеральной воды комнатной температуры без газа, затем лечь на правый бок, приложить к области печени теплую грелку. Лежать 40-60 мин.

МЕТОДЫ СБОРА МАТЕРИАЛА ДЛЯ ПЦР-ИССЛЕДОВАНИЙ:

Осуществлять взятие клинического материала, строго следуя инструкции, только стерильными одноразовыми инструментами в стерильные одноразовые флаконы, пробирки, контейнеры. Работать в одноразовых перчатках.

КРОВЬ ДЛЯ ПЦР

Забор крови производят натощак или через 3 часа после приема пищи из локтевой вены одноразовой иглой (диаметр 0,8-1,1мм) в специальную вакуумную систему типа «Vacuett» (сиреневые крышки – 6% ЭДТА). После взятия крови пробирку следует плавно несколько раз перевернуть вверх дном, чтобы кровь в пробирке тщательно перемешалась с антикоагулянтом. Гепарин в качестве антикоагулянта использовать нельзя!

Условия хранения:

при температуре 20-25˚С – в течение 6 часов с момента взятия;

при температуре 2-8˚С – не более 1 суток.

Недопустимо замораживание образцов цельной крови!

МОЧА ДЛЯ ПЦР

Следует забирать первую порцию утренней мочи в количестве 20-30 мл в специальный сухой стерильный контейнер на 60 мл.

Условия хранения:

при комнатной температуре – в течение 6 часов;

при температуре 2-8˚С – в течение 1 суток.

Допускается однократное замораживание-оттаивание материала

МАЗКИ ИЗ РОТОГЛОТКИ ДЛЯ ПЦР

Мазки берут сухими стерильными ватными тампонами на пластиковой основе вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки. После взятия материала тампон помещают в стерильную одноразовую пробирку со специальной транспортной средой и аккуратно обламывают пластиковый стержень на расстоянии не более 0,5 см от рабочей части, оставляя рабочую часть зонда с материалом в транспортной среде. Пробирку плотно закрывают крышкой.

Условия хранения и перевозки материала:

при комнатной температуре – в течение 6 ч.;

при температуре от 2 до 8˚С – в течение 3 суток;

при температуре минус 20˚С – в течение 1 месяца;

при температуре минус 70˚С – длительно.

Допускается только однократное замораживание-оттаивание материала.

ФЕКАЛИИ ДЛЯ ПЦР

Фекалии следует забирать из предварительно продезинфицированного горшка или подкладного судна. Небольшое количество забирать из нескольких мест одноразовой лопаточкой прикрепленной к крышке стерильного контейнера, в который забирают материал.

Условия хранения:

при комнатной температуре – в течение 6 часов;

при температуре 2-8˚С – в течение 3 суток;

при необходимости хранения более 3 суток – при температуре не выше -16˚С.

Комплексное выявление возбудителей острых кишечных инфекций в одном образце фекалий: одновременное выявление и дифференциация ДНК (РНК) микроорганизмов рода Шигелла (Shigella spp.) и энтероинвазивных E. coli (EIEC), Сальмонелла (Salmonella spp.) и термофильных Кампилобактерий (Campylobacter spp.), аденовирусов группы F (Adenovirus F) и ротавирусов группы А (Rotavirus A), норовирусов 2 генотипа (Norovirus 2 генотип) и астровирусов (Astrovirus))

Материал для исследования – фекалии

Забор: в специальный стерильный контейнер,
собрать кал из продезинфицированного судна одноразовой лопаточкой на крышке контейнера, доставить в течение 6 ч

Ожидание результата 7-10 дней

СОСКОБЫ (МАЗКИ) СЛИЗИСТЫХ ОБОЛОЧЕК УРОГЕНИТАЛЬНОГО ТРАКТА ДЛЯ ПЦР

Забор материала осуществляют с помощью специальных стерильных одноразовых инструментов – урогенитальных зондов, цитощеток.

1. Для получения соскоба эпителия из цервикального канала удалить слизь с поверхности шейки матки стерильным тампоном, ввести рабочую часть цитощетки в цервикальный канал и сделать два полных оборота по часовой и против часовой стрелки. Извлечь зонд, избегая касания стенок влагалища, и поместить его в пробирку с транспортной средой. Рабочую часть цитощетки обломить в области насечки и оставить в пробирке.

2. Для получения вагинального отделяемого провести по поверхности эпителия заднее-нижнего свода влагалища, вращая зонд и перенести зонд в пробирку с транспортной средой. Рабочую часть зонда обломить в области насечки и оставить в пробирке. Пробирку плотно закрыть крышкой.

3. Перед взятием соскоба из уретры необходимо обработать наружное отверстие уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором. Ввести рабочую часть зонда в уретру, несколькими вращательными движениями собрать отделяемое и перенести зонд в пробирку с транспортной средой. Рабочую часть зонда обломить и оставить в пробирке.

Для скринингового исследования материал из разных локализаций можно помещать в одну пробирку с транспортной средой. Для диагностики воспалительных заболеваний материал с каждой локализации следует забирать в отдельную пробирку.

Условия хранения:

при комнатной температуре в течение 48 часов;

при температуре 2-8˚С в течение 2 недель.

Источник