Техника взятия кала на кишечную группу
Оснащение:
- Чашки Петри со средами Эндо и Плоскирева для прямого посева. Пробирки с селенитовым бульоном как средой обогащения.
- Штатив для пробирок.
- Перчатки.
- Бланк-направление, стеклограф.
Подготовка к процедуре.
- Подготовить необходимое оснащение.
- Выписать направление в баклабораторию.
- Поставить стеклографом номер на пробирке, соответствующий номеру в направлении.
- Вымыть и осушить руки надеть перчатки.
Выполнение процедуры.
- Уложить ребенка на левый бок с согнутыми в коленях и приведенными к животу ногами.
- Раздвинуть ягодицы ребенка 1 и 2 пальцами левой руки и зафиксировать ребенка в данном положении.
- Правой рукой взять металлическую петлю и осторожно вращательными движениями ввести ее в прямую кишку и собрать содержимое со стенок.
- Примечание: глубина введения петли у детей раннего возраста 3 – 4 см., у старших детей – 6 – 8 см.; петлю продвигают вначале по направлению к пупку, затем параллельно позвоночнику.
- Извлечь петлю из прямой кишки и произвести прямой посев на питательные среды. Либо поместить петлю в пробирку с селенитовым бульоном.
- Примечание: не брать кал с явными примесями крови, т.к. кровь имеет бактерицидные свойства.
Завершение процедуры.
- Снять перчатки, поместить в дезраствор.
- Вымыть и осушить руки.
- Отправить материал в баклабораторию в сопровождении направления (допускается хранение пробирки в холодильнике при температуре +3 – +40С).
После я приступила к взятию материала на носительство стафилакокка
Взятие материала из носа:
- Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
- Берем стерильный ватный тампон, и не касаясь наружной поверхности носа вводим его в правый носовой ход.
- Снимаем слизь со стенок носовой перегородки.
- Вынимаем тампон из носа.
- Этот же тампон, не касаясь наружной поверхности носа, вводим в левый носовой ход.
- Снимаем слизь со стенок носовой перегородки
- Вынимаем тампон из носового хода.
- Делаем первичный посев материала на среду ЖСА тампоном, на половину чашки. (на вторую половину сеют материал из зева)
- Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С
Взятие материала из зева:
- Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
- Просим пациента открыть рот.
- В левую руку берем шпатель и вводим его в ротовую полость.
- Придавливаем язык книзу и немного кпереди.
- В правую руку берем стерильный тампон и вводим в полость рта не касаясь губ, языка, зубов и боковых стенок полости рта.
- Снимаем налет и слизь с миндалин , дужек мягкого неба и задней стенки глотки.
- Вынимаем тампон изо рта обследуемого, затем вынимаем шпатель.
- Делаем первичный посев материала на среду ЖСА тампоном на вторую половину чашки.
- Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С .
Взятие материала на носительство дифтерии
Цель исследования: выделение возбудителя дифтерии.
Взятие материала из носа на дифтерию и первичный посев на среду:
Оборудование: стерильный ватный тампон, чашка Петри со средой КБА, стеклограф, петля, штатив, пробирки, шпатели в крафт – пакете.
Ход работы:
- Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
- Берем стерильный ватный тампон, и не касаясь наружной поверхности носа вводим его в правый носовой ход.
- Снимаем слизь со стенок носовой перегородки.
- Вынимаем тампон из носа.
- Этот же тампон, не касаясь наружной поверхности носа, вводим в левый носовой ход.
- Снимаем слизь со стенок носовой перегородки
- Вынимаем тампон из носового хода.
- Делаем первичный посев материала на среду Клауберга тампоном, на половину чашки. (на вторую половину сеют материал из носа)
- Сначала делаем посев на участке площадь. 2*1кв.см. всей поверхностью тампона. Остальную площадь засевают этим же тампоном, круговыми движениями втирая материал в поверхность среды.
- Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С
16. Взятие материала из зева на дифтерию и первичный посев на среду:
Оборудование: стерильный ватный тампон, чашка Петри со средой КБА, стеклограф, петля, штатив, пробирки, шпатели в крафт – пакете.
Ход работы:
- Усаживаем пациента, объясняем ход процедуры.
- Просим пациента открыть рот.
- В левую руку берем шпатель и вводим его в ротовую полость.
- Придавливаем язык книзу и немного кпереди.
- В правую руку берем стерильный тампон и вводим в полость рта не касаясь губ, языка, зубов и боковых стенок полости рта.
- Снимаем налет и слизь с миндалин , дужек мягкого неба и задней стенки глотки на границе пораженного и здорового участков.
- Вынимаем тампон изо рта обследуемого, затем вынимаем шпатель.
- Делаем первичный посев материала на среду Клауберга тампоном, на половину чашки. (на вторую половину сеют материал из зева)
- Сначала делаем посев на участке площадь. 2*1кв.см. всей поверхностью тампона. Остальную площадь засевают этим же тампоном, круговыми движениями втирая материал в поверхность среды.
- Засеянные чашки помещают в термостат при 37*С .
Цифровой отчет:
Выписка направленный-42
Заполнение журнала-3
Выписка результатов-42
Взятие материала на стафилакокк-10
Взятие материала на носительство дифтерии -12
Взятие материала на кишечную группу-20
Шестой день практики.Шестой день я продолжила в регистратуре. В этот день я забирала материал на холеру(форма №30)
Взятие материала на холеру
Методы первого, второго, третьего, четвертого дня исследования при выделении и идентификации холерного вибриона. Тесты, применяемые для идентификации культуры холерного вибриона.
Алгоритм действия:
1. Материал засейте в 1% пептонную воду объемом 50-100мл.
2. Параллельно засейте материал на щелочной агар
3. Из материала приготовьте мазки, зафиксируйте в смеси Никифорова
4. Мазки из материала окрасьте фуксином и по Граму
5. Проверьте подвижность в раздавленной и висячей капле
6. Через 6-8 часов исследуйте пептонную воду на наличие пленки на поверхности среды
7. Пересейте на вторую пептонную воду
8. Приготовьте мазок из посева, окрасьте по Граму и фуксином
9. Поставьте с культурой ориентировочную реакцию агглютинации на стекле с О сывороткой
10. Поставьте с культурой ориентировочную реакцию агглютинации на стекле с О сывороткой
11. Колонии с щелочного агара изучите в РА
12. При положительной РА ставьте реакцию с типовыми сыворотками Огава и Инаба
13. При положительно РА изучите типичные морфологию и культуральные свойства
14. Типичную культуру высейте на полиуглеводную среду и бульон
15. После инкубации в течении 3-4 часов с бульонной культурой ставьте развернутую РА
16. Полиуглеводная среда изменяет цвет столбика (расщепление сахарозы), скошенная часть не меняется
17. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – морфология
18. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – подвижность в висячей или раздавленной капле
19. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – культуральные свойства
20. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – сахаралитические свойства
21. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – протеолитические свойства
22. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – гемолитические свойства
23. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – уреазная активность
24. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – восстановительные свойства (реакция холера-рот) восстанавливают нитраты в нитриты
25. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – диастатическая активность (расщепляет крахмал)
26. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – реакция Фогес-Проскауэра (красное окрашивание культуры при добавлении специального химического ингредиента)
27. Сделайте тест, идентифицирующий культуру холерного вибриона – проба на оксидазу (культура при добавлении специального химического ингредиента окрашивается в ярко-синий цвет)
Цифровой отчет:
Прием мазков из зева на холеру-6
Прием мазков из носа-6
Выписка направленный-6
Заполнение журнала-1
Выписка результатов-6
Седьмой день практики .День началсяв отделе по кишечным инфекциям.Цель: Прием и регистрация анализов.
Провести обеззараживание инфицированного материала, рабочего места, случайно загрязненных участков тела, одежды, предметов рабочего стола.Подготовка биологического субстрата( кал, моча, отделяемое из ран, ушей, влагалища, уретры, рвотные массы, промывные воды, ) к бактериологическому исследованию и первичный посев на твердые питательные среды и среды накопления.
Работа с термостатом и центрифугой. Техника безопасности.Выделение чистой культуры микроорганизмов и изучение ее основных свойств (морфологических, культуральных, биохимических, антигенных свойств).Приготовить микропрепараты из микробных культур и патологического материала, окраска их простыми и сложными методами окраски (по Граму, окраска капсул по Бурри по Цилю Нильсену и т.д.).Микроскопирование с иммерсионной системой и в «темном поле».
Приготовить нативные препараты висячей и «раздавленной» капли. Микрокопирование.Постановка и учет иммунологических реакций: агглютинации на стекле и объемным методом, РПГА. Регистрация и выдача результатов. Ведение дневников
Микробиологическое исследование.
Цель исследования:выделение возбудителей заболевания и определение серовара сальмонелл.
Материалом для исследования могут быть:испражнения, кровь, моча, рвотные массы, промывные воды, дуоденальное содержимое. В данном случае материалом для исследования служит испражнения взятые с помощью тампона из прямой кишки(ректальный метод).Доставка материала в лабораторию должна осуществляться в течение 2 ч.После сбора материала, тампон помещают в селенитовый бульон(среда обогащения- для накопления сальмонелл) и ставят в термостат при температуре 37 градусов на 24 ч.Посев материала на дифференциальные среды Плоскирева, Эндо и ВСА (висмут-сульфит агар)
Посев на ВСА:
1.Подписала чашку Петри со средой- поделила на две части и подписала каждую сторону.
2.Взяла тампон с материалом- сначала сделала площадку, а затем произвела посев штрихами до половины чашки.
3.Следующий посев произвожу на другой половине чашки Петри.(18 чашек)
4.Чашки ставлю в термостат при температуре 37 градусов на 24 ч.
Колонии сальмонелл на среде ВСА- мелкие,черные,блестящие,когда снимают петлей оставляют черное дно.
Колонии сальмонелл на среде Плоскирев– мелкие нежные, полупрозрачные,с ровными краями.
Колонии сальмонелл на среде Эндо– мелкие нежные,розовые, полупрозрачные.
Обработала стол дез.средством.
5.Просмотр чашек,отсев подозрительных колоний на среду Клиглера (трехсахарная среда).Изменение цвета среды в скошенной части при расщеплении сахарозы и лактозы, а изменение цвета в столбике- при расщеплении глюкозы. Сами бактерии при ферментации углеводов образуют газ (водород и углекислый газ),происходит скопление газа на дне пробирки. Эта среда позволяет определить образование сероводорода, при этом агар чернеет.
6.Постановка биохимического ряда- ПБДЭ(см.табл.)
7.Фаготипирование(делается параллельно с биохимией)
Рекомендуемые страницы:
Читайте также:
Источник
ЦЕЛЬ:собрать кал для исследования на кишечную группу.
ОСНАЩЕНИЕ:
1. Стерильная пробирка с металлической ректальной петлей и консервантом;
2. Перчатки и маска;
3. Фартук;
4. Клеенка и пеленка;
5. Стеклограф;
6. Бланк – направление.
ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА:
1. Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие на проведение процедуры;
2. Сообщите время и место проведения процедуры.
ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:
1. Подготовить необходимое оснащение;
2. Заполнить направление в бактериологическую лабораторию;
3. Поставить стеклографом номер на пробирке, соответствующий номеру на направлении;
4. Вымыть и осушить руки;
5. Надеть фартук, маску и перчатки.
ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:
1. Уложить пациента на бок с ногами согнутыми в коленях и приведенными к животу;
2. Раздвинуть ягодицы 1 и 2 пальцами левой руки и зафиксировать в этом положении;
3. Правой рукой взять из пробирки петлю и осторожно вращательными движениями ввести ее в прямую кишку сначала по направлению к пупку 3 – 4 см, а затем параллельно позвоночнику 4 – 6 см и собрать содержимое со стенок;
4. Извлечь петлю из прямой кишки и поместить ее в пробирку с консервантом, не касаясь краев;*
5. При необходимости материал сеется на чашку Петри со средой Плоскерева, Эндо.
ЗАВЕРШЕНИЕ:
1. Помочь пациенту одеться и поблагодарить его;
2. Пеленку сбросить в бак для грязного белья;
3. Клеенку обработать двукратным протиранием 3% хлорамином с интервалом 15 минут;
4. Снять перчатки и замочить их в 5% растворе хлорамина на час, затем утилизировать;
5. Вымыть и осушить руки;
6. Организовать доставку материала в бактериологическую лабораторию.**
Примечания: *Не брать кал с явными примесями крови;
**Материал можно доставить в лабораторию через 8 – 12 часов, при условии его хранения в термостате при температуре +36 – +370С.
ПОДГОТОВКА ВАКЦИН И СЫВОРОТОК К ВВЕДЕНИЮ.
ЦЕЛЬ:обеспечить правильную подготовку иммунных препаратов к введению.
ПОМНИ! Иммунные препараты хранятся в холодильнике при Т = 0 – + 80 С.
ОСНАЩЕНИЕ:
1. Холодильник для хранения иммунных препаратов;
2. Иммунные препараты (вакцины и сыворотки);
3. Стерильный процедурный столик;
4. Ковшик с теплой водой;
5. Марлевые салфетки;
6. Водный термометр;
7. Стеклянная мензурка (стаканчик) – 2 шт.;
8. Шприцы, пилка для ампул, конус из фольги (для вакцин от краснухи, кори, БЦЖ);
9. Учётная документация (Форма 112, журнал регистрации прививок ф. 063, сертификат прививок).
ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:
1. Контроль записи врача о препарате, его дозе.
ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:
1. Проверить температурный режим холодильника по журналу регистрации температуры в холодильнике;
2. Открыть холодильник и проверить температуру в холодильнике;
3. Взять коробку с препаратом, сразу закрыть дверцу холодильника;
4. Прочитать наименование препаратов, достать необходимое количество ампул и инструкцию по применению;
5. Проверить целостность ампул, отсутствие замороженного состояния;
ПОМНИ! Если препарат заморожен, то его нельзя использовать, и он подлежит утилизации.
6. Сверить маркировку ампул, серию, контрольный номер, срок годности с коробкой, для сухих вакцин проверить физические свойства вещества;
ПОМНИ! Сухие вакцины подогреваются при комнатной температуре вместе с растворителем, жидкие вакцины можно подогревать на водяной бане.
7. Поставить ампулы в стеклянную мензурку;
8. В ковшик положить салфетку и налить теплую воду (Т = 25 – 300 С.), проверить температуру водным термометром;
ПОМНИ! Сыворотки подогреваются на водяной бане до температуры 45 – 500 С., а затем остужаются до температуры 30 – 350
9. Поставить мензурку в ковшик на 15 – 20 минут.
10. Подогреть ампулу до комнатной температуры, оценить физические свойства раствора (согласно инструкции).
11. Поставить ампулу на процедурный столик в градуированный стаканчик (мензурку), вакцины против краснухи, кори и туберкулеза накрыть конусом из фольги.
12. Приготовить необходимое количество шприцов, стерильный лоток и стерильный материал.
ПРИМЕЧАНИЕ: если Вы обнаружили замороженный препарат, проверьте все препараты в холодильнике, если они не соответствуют требуемым параметрам, тогда все препараты списываются и утилизируются.
ТЕХНИКА ВВЕДЕНИЯ АДС, АДС-М, АД.
ЦЕЛЬ:профилактика дифтерии и столбняка.
ОСНАЩЕНИЕ:
1. Препараты АДС (АДС-М, АД);
2. Стерильный процедурный столик;
3. Стерильные ватные шарики, стерильные салфетки, пинцет;
4. Мензурка, пилка;
5. Стерильные резиновые перчатки;
6. Шприц однократного применения 2,0 мл с иглой для внутримышечной инъекции;
7. 70% раствор этилового спирта,
8. 5 ёмкостей с 5% раствором хлорамина;
9. учётная документация (форма 063/у, журнал регистрации прививок).
ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА:
1. Провести психологическую подготовку пациента;
2. Объяснить цель и ход процедуры, получить согласие на проведение процедуры;
3. Сообщить время и место проведения процедуры.
ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:
1. Контроль записи врача в индивидуальной карте пациента перед проведением инъекции.
2. Достать ампулы с препаратом из холодильника заранее, проверить маркировку, серию, №, срок годности, целостность.
3. Подогреть ампулу до комнатной температуры.
4. Вымыть руки.
5. Надеть перчатки.
ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:
1. Оценить физические свойства раствора (согласно инструкции).
2. Протереть шейку ампулы стерильным ватным шариком, смоченным 70% раствором этилового спирта.
3. Надпилить пилкой.
4. Вторично протереть этиловым спиртом и обломить конус ампулы.
5. Отработанный материал положить в ёмкость с 5% раствором хлорамина.
6. Вскрыть одноразовый шприц (по алгоритму).
7. Шприцем набрать из ампулы препарат – 0,5 мл.
8. Вытеснить воздух в стерильную салфетку.
9. Обработать подлопаточную область двумя ватными шариками, смоченными 70% раствором этилового спирта дважды (второй шарик оставить в руке).
10. Ввести вакцину подкожно (по алгоритму п/к инъекции).
11. Извлечь иглу, обработать место инъекции шариком.
12. Замочить ватные шарики и шприц в ёмкостях с 5% раствором хлорамина.
13. Оставить пациента под наблюдением на 30 минут.
14. При отсутствии жалоб поблагодарить пациента и отпустить.
ЗАВЕРШЕНИЕ:
1. Провести нулевую дезинфекцию ампулы, иглы, шприца, шариков и салфеток, затем дезинфекцию и утилизировать.
2. Снять перчатки и замочить их в 5% растворе хлорамина на 1 час, затем утилизировать.
3. Вымыть руки, осушить.
4. Зарегистрировать данные о введении препарата в учётную документацию (Форма 063/у, журнал регистрации прививок).
Источник
Сдача кала на анализ — необходимая процедура при первичной диагностике патологий в работе органов желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), поскольку кал является конечным продуктом пищеварения. Исследование позволяет выявить сбои в работе кислотообразующей и ферментативной систем; неправильную работу поджелудочной железы и печени; установить факт слишком быстрой эвакуации не переваренных остатков пищи; неполное всасывание веществ в кишечнике; воспаление органов ЖКТ; развитие состояния дисбиоза, а также различные формы колита.
Содержание
Подготовка к сдаче анализа кала
Достоверность полученных результатов исследования зависят не только от точной реализации методики анализа в соответствии с требованиями стандартов, но и от правильной подготовки самого пациента. Рекомендации как правильно подготовиться, перед тем как сдавать кал:
- биоматериал должен быть собран естественным путём. За 3 суток до сбора необходимо исключить слабительные средства, ректальные свечи и масла;
- за 2 суток по согласованию с лечащим врачом следует отменить приём любых лекарственных препаратов, особенно тех, которые оказывают прямое влияние на органы ЖКТ и цвет кала. При невозможности отмены – оповестить сотрудников лаборатории о принимаемых лекарствах;
- между процедурой сбора кала на анализ и завершением курса антибиотикотерапии следует выдержать временной интервал с минимумом в 2 недели. Данный факт объясняется побочными эффектами большинства групп антибиотиков – дисбактериозом, в результате угнетения жизнедеятельно не только патогенной, но и нормальной симбиотической микрофлоры в кишечнике человека.
Соблюдение вышеперечисленных правил позволит избежать ложных результатов и получить максимально точную картину состояния органов ЖКТ пациента.
Как собрать кал на анализ у взрослого человека?
Высокая информативность анализа кала и широкий перечень исследуемых критериев исследования позволяет относить его к обязательным при посещении врача, а также требует особого внимания к процедуре сбора биоматериала. Как собрать анализ кала — правила:
- первоначально следует приобрести специальный стерильный контейнер с ложечкой, фиксированной к крышке, в аптеке или отделении лабораторной службы (запрещается его мыть или споласкивать). Многие пациенты задаются вопросом – можно ли сдавать кал для анализа в стеклянной баночке? В свете доступности для каждого пациента специальной пластиковой тары (низкая цена в аптеке и бесплатно в лаборатории) рекомендуется избегать самодельных контейнеров, особенно при установлении факта дисбактериоза. Домашние стеклянные баночки не гарантируют стерильности, а значит, не исключён вариант попадания посторонней микрофлоры и получение недостоверных результатов;
Фото контейнера для сбора кала
- строго запрещается прикасаться руками ко дну или к поверхности ложечки полученного стерильного контейнера;
- перед процедурой сбора проводятся гигиенические процедуры с исключением душистых мыльных и косметических средств, а также масел;
- биоматериал собирают специальной ложечкой, прикреплённой к крышке контейнера из чистой ёмкости или судна. Важно: собирать кал, который касается дна унитаза – недопустимо, поскольку не исключён риск занесения чужеродных бактерий и простейших;
- примеси мочи должны отсутствовать;
- заполнять контейнер следует минимум на 1/3 общего объёма. Меньшего количества биоматериала может быть недостаточно для правильного приготовления мазка для микрокопирования или посева.
Этапы сбора кала на анализ
Как собрать на анализ кал у грудничка (копрограмму)?
Основная статья: Копрограмма — что это за анализ, как правильно сдавать; расшифровка у детей и взрослых
Копрограмма проводится для оценки физических и химических свойств кала, кроме того, устанавливается факт наличия неестественных включений и других компонентов. Соотношение в кале бактерий и непереваренных остатков пищи в норме составляет 1:1. Однако следует отметить, что даже у здорового человека показатели могут существенно варьировать, в первую очередь это зависит от способа питания и количество употребляемой жидкости.
У грудничков сильных отклонений от нормы быть недолжно, поскольку их рацион состоит преимущественно из молока. Анализ кала новорождённого не является строго обязательным. Данный факт объясняется тем, что при рождении у ребёнка отсутствуют бактерии в кишечнике. Заселение органов ЖКТ – это постепенный процесс и происходит вместе с молоком матери. Анализ кала у грудничка проводят исключительно по медицинским показаниям.
5 правил как взять кал для анализа у ребёнка:
- применяется исключительно стерильный контейнер;
- разрешается собирать биоматериал с подгузника или пелёнки, воспользовавшись специальной ложечкой. В ситуации, когда если у ребёнка жидкие испражнения, то их можно аккуратно перелить в тару максимально быстро пока не произошло впитывание в ткань пелёнки;
- если сбор осуществляется с горшка, то предварительно его необходимо тщательно вымыть с детским мылом и хорошо ополоснуть под водой;
- материал забирается минимум из трёх различных точек с целью исключения случайного непопадания образца с патогенными микроорганизмами;
- запрещается забор материала после клизмы или свечей ребёнку, поскольку проводится определение естественной консистенции, цвета и запаха каловых масс.
Можно ли собрать кал с вечера на анализы у ребенка?
Детям разрешено собирать биоматериал после обеда. Однако лучшим вариантом считается доставка пластиковой тары с каловыми массами в лабораторию в течение трёх часов.
Особую значимость правило приобретает для обследования пациента на дизгруппу и дисбактериоз. Поскольку для реализации данного исследования применяется микробиологический метод, суть которого заключается в высеве образца биоматериала с последующим выделением чистой культуры, идентификацией и реализацией теста на чувствительность прокариот к антибиотикам при необходимости. При продолжительном хранении материала бактерии могут погибнуть и не вырасти на питательной среде, в итоге человек получит ложноотрицательные показатели обследования.
Сколько кала нужно для анализа грудничка?
У детей до 1 года необходимо собрать не меньше 1 чайной ложки жидкого или оформленного кала. Начиная со второго года жизни всем пациентам необходимо предоставлять в лабораторную службу минимум 2 чайные ложки каловых масс.
Сколько можно хранить кал для анализа в холодильнике?
Cколько может храниться анализ кала? Нужно обратить внимание, что наиболее предпочтительным вариантом является – максимально быстрая доставка сотрудникам лаборатории для дальнейших манипуляций. Однако затруднительно заранее предугадать и совместить с часами работы лабораторной службы акт дефекации для каждого человека в отдельности. В связи с этим для пациентов логичен и закономерен вопрос – где хранить кал для сдачи анализа?
Лучшая сохранность материала обеспечивается благодаря холодильнику. Предпочтительный температурный режим находиться в интервале от +2 до + 8 ° С. Крышка пластиковой тары должна быть плотно завинчена, а сама ёмкость помещена в целлофановый пакет.
Максимально допустимое время нахождения материала в холодильнике — с вечера до утра, после чего он сразу доставляется в лабораторию. Не допускается предоставление на исследование кала, хранившегося более 6 часов в холодильнике и более 3 часов – без него.
Важно: запрещается помещать кал для хранения в морозильную камеру.
Заморозка с последующим оттаиванием приводит к изменению физических параметров и гарантирует недостоверные результаты.
Для каких анализов требуется сбор кала?
Перечень исследований, в направлении к которым биоматериалом является кал:
- копрограмма – комплексная оценка физико-химического состояния каловых масс. Применяется для выявления наличия патологий в работе органов ЖКТ, а также для оценки результативности выбранной тактики лечения;
- дисбактериоз, нередко в сочетании с тестом на чувствительность к различным антибиотикам. Позволяет установить причину диареи и иных расстройств пищеварения, а также подобрать адекватную схему антибиотикотерапии;
- бактериологический анализ на выявление наличия патогенной микрофлоры и тифопаразитарной группы является обязательным для всех пациентов при госпитализации в стационар;
- исследование на скрытую кровь необходимо для оценки степени повреждения слизистой оболочки, выстилающей органы ЖКТ. Преимущество метода заключается в возможности выявить изменение концентрации гемоглобина в эритроцитах ещё до того как данный факт можно быть диагностировать методом микроскопии мазка крови;
- установление факта наличия гельминтов, лямблий, опистархозы, эхинококкоза, токсокариоза и трихнеллёза, преимущественным местом локализации которых являются нижние отделы ЖКТ.
Важные выводы о том, как правильно сдавать анализ кала
- кал на исследование сдавать в стерильный одноразовый пластиковый контейнер с ложечкой, вторичное использование которого запрещено;
- важно строго соблюдать рекомендации по подготовке пациента перед сбором биоматериала;
- минимальные объёмы для грудничков – 1 чайная ложка кала любой консистенции, для более взрослых – от 2-х чайных ложек;
- максимальная длительность хранения не должна превышать 6 часов в холодильнике, запрещается заморозка в морозильной камере;
- вопрос о том, как часто сдавать анализ кала решается лечащим врачом при наличии особых показаний и подозрений на патологии.
Источник